Котик А.Н., Труфанова В.А

Институт птицеводства Украинской академии аграрных наук

На главную страницу Другие статьи Тел. +38(05747) 78-058

Представленные на Конгрессе материалы показали, что проблема микотоксинов в кормах и микотоксикозов птиц весьма актуальна для птицеводства многих стран. Частота и уровни микотоксинов, которые расцениваются как наиболее существенный фактор контаминации зерна, зернопродуктов и комбикормов, в большинстве стран весьма значительны. Например, в Италии, как свидетельствуют Rizzi L. et al., 30 % зерна контаминировано микотоксинами. Наиболее значимы:

Микотоксины	Продуценты	Действие на птицу
Зеараленон	Fusarium roseum, F. graminearum	Сходное с 17-б-эстрадиолом
Афлатоксины	Aspergillus flavus, A. parasiticus	Ухудшение продуктивности и эффективности корма, поражение печени, иммуносупрессия
Фумонизины	F. moniliforme, F. Proliferatum, F. nygamai
Охратоксины	A.ochraceus, Penicillium cyclopium, P. verrucosum

Потенциальный эффект микотоксинов и сотен других токсических веществ биологического и химического происхождения, которые могут содержаться в корме, нередко носит характер синергизма; определение наличия в корме нескольких индивидуальных веществ недостаточно для общей оценки безопасности корма, поэтому остается актуальной разработка соответствующих биотестов. Для выявления афлатоксина предлагают использовать культуру клеток LF-гепатомы; лимфоциты селезенки чувствительны к патулину и охратоксину и могут быть использованы для их выявления. Kounev Z. а. Collett S. (США) предложили для суммарной оценки токсичности корма биопробу на фибробластах утиных эмбрионов; 288 из 1801 проанализированных образцов были квалифицированы как токсичные и происходили из хозяйств, где имело место ухудшение показателей продуктивности птицы.

Результаты исследований последних десятилетий позволяют существенно уточнить оценку значимости микотоксинов: даже минимальные их уровни в кормах небезопасны для животных. При высокой продуктивности птицы, близкой к генетическим пределам, незначительное ухудшение абсорбции питательных веществ ведет к субклиническим нарушениям метаболизма. Биохимические изменения сыворотки крови и ухудшение иммунологических показателей проявляются у кур мясной породы, как сообщили Afzali N. а. Devegowda G. (Индия), даже при весьма низких концентрациях афлатоксина в корме. Возрастание активности гамма-глютамилтрансферазы и глютаматпируваттрансаминазы, а также снижение поствакцинальных титров сывороточных антител против инфекционной бурсальной и Ньюкаслской болезней зарегистрировано при 50 мкг/кг, а снижение концентрации сывороточного протеина - при 100 мкг/кг.

В условиях эксперимента на курах в течение 4-х недель фумонизин В₁ (1,15 мг/кг корма) и зеараленон (30 мг/кг) не вызвали каких-либо отклонений в сравнении с контролем; афлатоксин В₁ (0,5, 1,8 и 2,5 мг/кг корма) вызвал изменение окраски и массы желтка. Следствием включения в корм охратоксина А (0,2 мг/кг) в течение 12-недельного периода было снижение индекса Хау. Остаточные количества микотоксинов или их метаболитов в яйцах подопытных кур не выявили, однако находили в печени и в помете (Rizzi L. et al.).

Для стран с различными климатическими условиями продолжают оставаться актуальными проблемы, связанные с контаминацией зерна фузариотоксинами. В природных условиях зерно загрязняется трихотеценовыми фузариотоксинами, зеараленоном, фузариевой кислотой, к действию которых значительно более чувствительны свиньи в сравнении с курами. Дезоксиниваленол, один из наиболее распространенных фузариотоксинов, у свиней вызывает повышение в головном мозгу уровней триптофана, 5-гидрокситриптамина и 5-гидроксииндолуксусной кислоты, что связано с ухудшением аппетита. У бройлеров другой трихотеценовый фузариотоксин, Т-2 токсин, вызывает увеличение в мозгу концентрации допамина и снижение норэпинефрина, в то время как уровень 5-гидрокситриптамина не изменяется. В этой связи исследователи из Индии и Канады (Swami H.V.L.N. et al.) показали, что неодинаковая выраженность потребления корма, содержащего контаминированную микотоксинами Fusarium кукурузу и пшеницу, у кур и свиней определяется существенными нейрохимическими различиями в коре полушарий, гипоталамусе и других участках головного мозга. У свиней при контаминированном корме отмечено снижение допамина, 3,4-дигидроксифенилуксусной кислоты, гомованилловой кислоты и норэпинефрина; у бройлеров изменения носили противоположный характер.

В опытах Chowdhury S.R., Smith T.K. (Канада) к контаминированному микотоксинами Fusarium корму куры кросса ISA Broun оказались более чувствительными, чем утки.

Наиболее практичным средством снижения концентрации афлатоксина в кормах является аммиак. Safameher A.R. et al. (Иран) сообщили об эффективности обработки аммиаком контаминированного афлатоксином зерна, вследствие чего отмечено значительное увеличение потребления корма и живой массы бройлеров; на конверсии корма аммонизация не сказалась.

Во многих странах ведутся интенсивные испытания эффективности антитоксических препаратов, преимущественно сорбентов. Girish C.K. a. Devegowda G. (Индия) сообщили, что применение гидрированных Na, Ca-алюмосиликатов (10 кг/т корма) в процессе сравнительного изучения эффективности двух сорбентов вызвало значительное улучшение показателей состояния и продуктивности бройлеров при афлатоксикозе, однако оказалось неэффективным при Т-2 токсикозе. Следствием одновременного включение в корм бройлеров афлатоксина (2 мг/кг) и Т-2 токсина (1 мг/кг) был их аддитивный эффект, проявившийся в снижении массы тела, потребления и эффективности корма, увеличении относительной массы внутренних органов и снижении титров антител. Использование Микосорба (1 кг/т корма) при экспериментальном микотоксикозе благоприятно сказалось на живой массе, потреблению корма, вызвало снижение относительной массы внутренних органов, увеличение титров поствакцинальных антител, а также массы бурсы и тимуса.

Devegowda G. а. Aravind K.L. (Индия) оценили эффективность модифицированных глюкоманнанов (препарата Микосорб) в количестве 0,05% при внесении в корм бройлеров охратоксина А (0,5 мг/кг). В группе, получавшей охратоксин А, живая масса была на 17,6% меньше, чем в контроле; почки увеличенные, гиперемированные, рыхлой консистенции; отмечено увеличение активности г-глютамилтрансферазы на 38,5%, снижение общего протеина на 16,4% и гематокрита на 11,3%; смерность составила 8,57%. Включение Микосорба уменьшило токсическое действие охратоксина А в сравнении с группой, получавшей только охратоксин А, что проявилось в улучшении живой массы на 3,6%, увеличении общего протеина на 11%, гематокрита на 4,7 % и снижении активности г-глютамилтрансферазы на 14,7%.

Murthy T.N.K. a. Devegowda G. (Индия) определили количество афлатоксина В1 в содержимом кишечника 5-недельных цыплят после скармливания им корма, содержащего афлатоксин В1 и Микосорб (0 или 0,1%); в случаях содержания в корме афлатоксина В1 (250 или 500 мкг/кг) его концентрации в содержимом кишечника через 30, 60, 90 и 120 минут составляли 83-84 %, 63-64 %, 12-13 % и 8-11 %, соответственно. Если же кроме афлатоксина в корм внесли Микосорб, то соответствующие концентрации были намного ниже – 25-27 %, 21%, 10-11 % и 8-9 %. Авторы заключили, что Микосорб in vivo является эффективным адсорбентом относительно афлатоксина в течение первого часа.

Полученные из дрожжей маннан-олигосахариды (МОС) в количестве 1 г/кг корма визвали существенное улучшение потребления и эффективности корма, а также привесов перепелов при экспериментальном афлатоксикозе (Oguz H. a. Parlat S.S., Турция).

Включение Микосорба (0,5 или 1 кг/т) в состав комбикорма, содержащего 30 % кукурузы, контаминированной Т-2 токсином (400 мкг/кг) и фумонизином В1 (560 мкг/кг), вызвало существенное увеличение массы бройлеров, которых выращивали до 42-дневного возраста (1802 г, в контроле – 1683 г), снижение потребление корма до 3645 г против 3801 г в контроле и конверсии корма до 2,02 против 2,26 в контроле (Davtyan D. et al., Россия) .

Внесение в корм препаратов-сорбентов Микосорба, Тоxifix и Sal-tech не сказалось на потреблении и эффективности корма и живой массе индеек породы крупная белая, наблюдения за которыми вели в течение периода с 56 по 109 день жизни; не выявлено различий по качеству тушек (Dede E. a. Sengul T., Турция).

Эффект клиноптилолита (15 г/кг) при включении в корм бройлерам афлатоксина в течение 42-дневного периода выращивания испытали Ortatatli M. et al. (Турция). В концентрации 50 мкг/кг афлатоксин вызвал лишь очень слабые гистопатологические изменения в печени у 3 из 10 подопытных цыплят. В концентрации 100 мкг/кг гистопатологические изменения были более выражены и включали гиперплазию желчных протоков, дегенеративные процессы, жировое перерождение и перипортальный фиброз в печени, лимфоидное истощение бурсы, а также дегенерацию почечных канальцев; частота выявления патизменений была в пределах от 3 до 8 на 10 цыплят. Токсическое действие афлатоксинa в концентрации 100 мкг/кг было значительно слабее в случае внесения в корм клиноптилолита – патизменения выявлялись реже и были значительно менее выражены.

В процессе переработки природных цеолитов с целью изменения их полярности Resanovic R. et al. (Сербия и Черногория) получили модифицированный клиноптелолит, характеризующийся способностью адсорбировать до 95% афлатоксина В1, выраженность которой зависит от концентрации афлатоксина В1, продолжительности адсорбции и рН раствора. У цыплят, которым в течение первых трех недель жизни авторы вводили перорально афлатоксин В1 в дозе 100 мкг/кг массы тела, отмечены гистопатологические изменения в печени, почках, мышечном желудке и мышцах; в почках, мышечном желудке и мышцах в большинстве случаев выявляли остаточные количества афлатоксина В1. Внесение 0,5% модифицированного клиноптелолита в корм позволило предотвратить гистопатологические изменения, а также накопление в органах остаточных количеств афлатоксина В1, что свидетельствует о высокой эффективности препарата при афлатоксикозе.

В случаях контаминации корма охратоксином использование различных адсорбентов, по мнению Kurkure N.V. et al. (Индия), малоэффективно. В связи с этим названные авторы изучили влияние витамина Е и селена при охратоксикозе бройлеров. Период выращивания бройлеров составил 8 недель. Одна из групп служила контролем, второй и третьей группам в течение первых 6 недель в корм включили охратоксин А в количестве 1 мг/кг; третьей группе включили также витамин Е (500 ИЕ/кг) и селен (0,1 мг/кг). Масса тела бройлеров в 1-й, 2-й и 3-й группах через 6 недель составляла 1345+41, 790+38 и 796+39 г и через 8 недель – 2069+37, 1366+38 и 1429+31 г, соответственно. Не отмечено различий между группами по общему объему клеток крови и количеству эритроцитов. Как в 6-ти так и в 8-недельном возрасте у бройлеров 2-й и 3-й групп, в корм которым включили охратоксин А, уровни гемоглобина в крови были значительно ниже, чем в контроле – 8,20-8,26 против 9,00 в 6 недель и 8,43-9,23 против 10,06 г% в 8 недель; выраженность реакции на в/к введение DNCB, свидетельствующей об уровне клеточного иммунитета, у групп получавших охратоксин А, также была значительно слабее, чем в контроле. При содержании в корме охратоксина А у бройлеров наблюдали лейкопению и титры антигеагглютининов были ниже, чем в контроле; после исключения охратоксина А из корма различия между группами по этим показателям были незначительные. Улучшение показателей иммунного состояния бройлеров 3-й группы в сравнении со 2-й группой, отмеченное в период после исключения из корма охратоксина А, авторы объясняют антиоксидантным действием витамина Е и селена.

С целью снижения токсического действия афлатоксина В1 при содержании его в корме в количестве 300 мкг/кг Sapcota D. et al. (Индия) испытали эффективность двух добавок - высушенного измельченного травяного растения Andrographis paniculata в количестве 1-2 г/кг корма и аналога гидрокси-метионина в количествах 0,6, 1,0, 1,3 и 1,6 %.

Включение каждой из добавок имело следствием улучшение потребления и конверсии корма и значительное увеличение живой массы бройлеров.

Kalorey D.R. et al. (Индия) сообщили об улучшении показателей роста бройлеров и эффективности использования корма под влиянием препарата TOXIROAK, представляющего собой смесь экстрактов растений и гидрированных алюмосиликатов, при экспериментальном хроничском токсикозе вызванном включением в корм афлатоксина (0,2 мг/кг) и охратоксина (0,2 мг/кг).

Выводы. Доклады, представленные на ХХII-м всемирном конгрессе птицеводства, показывают актуальность проблемы микотоксинов для многих стран, а также необходимость контроля качества кормов и совершенствования мер профилактики микотоксикозов. Актуальна разработка биотестов для общей оценки безопасности корма. Во многих странах наиболее практичным средством снижения концентрации афлатоксина в кормах является аммиак. Ведутся интенсивные испытания эффективности антитоксических препаратов, преимущественно сорбентов. Использование сорбентов оправдано для профилактики афлатоксикоза и менее эффективно в случаях загрязнения кормов трихотеценами и охратоксином.

Доклады, опубликованные в «Proceedings XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul -Turkey»:

Afzali N., Devegowda G. The effect of graded levels of dietary aflatoxin on certain biochemical parameters in broiler breeders // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. - P.559.

Chowdhury S.R., Smith T.K. Effects of feeding grains naturally-contaminated with Fusarium mycotoxins on performance and metabolism in avian species // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 370.

Davtyan D., Chesnokova N.Y., Egorov I.A., Spring P. Effect of yeast cell wall derived mycotoxin adsorbent on performance of broilers fed a T-2 toxin and fumonisin B1 contaminated diet // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – 524.

Dede E., Sengul T. The effect of different toxin bindings supplemented in diet on the growth performance and carcass characteristics of large white female turkeys. // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 453.

Devegowda G., Aravind K.L. Efficacy of modified glucomannan (Mycosorb) to reduce the toxic effects of ochratoxin A in broiler chickens // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. - P.584.

Girish C.K., Devegowda G. Efficacy of modified glucomannan (Mycosorb) and HSCAS to alleviate the individual and combined toxicity of aflatoxin and T-2 toxin in broiler chickens.// XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P.591.

Kalorey D.R., Pathak M.A., Bodade J.T., Lonkar P.P., Kurkure N.V. Effect of TOXIROAK on combine mycotoxicosis in broilers // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 488.

Kounev Z., Collett S. Development of an in vitro cytotoxicity assay to test poultry feeds for toxic compounds // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 578.

Kurkure N.V., Kalorey D.R., Bhandarkar A.G. The effect of vitamin E and selenium on reversal of ochratoxicosis in broilers: growth, haematological and immunological study // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. - P. 470.

Murthy T.N.K., Devegowda G. Efficacy of modified glucomannan (Mycosorb) to adsorb aflatoxin B1 in gut conditions of broiler chickens // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 471.

Oguz H., Parlat S.S. A study of organic protection of aflatoxicosis in Japanese quail by dietary addition of mannan oligosaccharide (Bio-Mos) // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 447.

Ortatath M., Oguz H., Hatipoglu F., Karaman M. Evaluation of pathological changes in broilers during chronic aflatoxin (50 and 100 ppb) clinoptilolite exposure // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 478.

Resanovic R., Sinovec S., Sinovec Z. Effect on aflatoxin B1 tissue residues by addition of modified clinoptilolite to aflatoxin B1 contaminated broiler diets // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 311.

Rizzi L., Zaghini A., Altafini A., Roncada P., Paganelli R., Simioli M. Mycotoxins in diets for laying hens: effect on egg quality and residues in eggs and livers// XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 815.

Safameher A.R., Allameh A., Shivazad M., Mirhadi A. The performance and haematological characters in broiler chicks fed ammonia-treated aflatoxin contaminated feed // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 1000.

Sapcota D., Islam R., Baruah K.K. Effect of dietary methionine-hydroxy-analoge on productive performance of broilers in experimental aflatoxicosis // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 528.

Sapcota D., Islam R., Baruah K.K. Use of Andrographis paniculata in counteracting aflatoxicosis in broilers // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 599.

Swami H.V.L.N., Smith T.K., MacDonald E.J. Brain neurochemical changes might explain lesser susceptibility of broiler chickens to Fusarium mycotoxicosis as compared to pigs // XXII World’s Poultry Congress. 8-13 June 2004, Istanbul-Turkey. Book of Abstracts. – P. 240.

На главную Другие статьи На начало